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DETECCIÓN DE ENFERMEDADES EN CÉSPED II: SPRING DEAD SPOT

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Javier Méndez Lorente
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Índice de contenidos: DETECCIÓN DE ENFERMEDADES EN CÉSPED II: SPRING DEAD SPOT

Spring dead spot fue observado por primera vez en Oklahoma en 1936. La enfermedad ampliamente extendida sobre todo en bermuda se caracteriza por áreas circulares muertas en el césped al despertar de la dormancia invernal. Aunque se desconocía la causa exacta en ese momento, se especulaba que estaba relacionada con un hongo del género Helminthosporium. En la década de 1980, la investigación en los Estados Unidos identificó a Leptosphaeria korrae como el principal agente causal de Spring dead spot.

Agente causal

En la década de 1980, se detectó que el agente causal de la enfermedad conocida como “Spring Dead Spot” (SDS) son hongos del género Ophiosphaerella. En particular, Ophiosphaerella korrae es uno de los principales agentes causales de esta enfermedad en el césped Bermuda. Estos hongos son del complejo de hongos ectotróficos que infectan las raíces y se encuentran en el suelo. Atacan las raíces, rizomas y estolones de las plantas de césped, causando que se vuelvan amarillas, se marchiten y eventualmente mueran.

  • Se han identificado tres especies como causantes de la SDS que son, O. korrae, O. herpotricha, y O. narmari, todas dentro del género Ophiosphaerella. La clasificación taxonómica de los hongos que causan la enfermedad conocida como “Spring Dead Spot” (SDS) es la siguiente:

– Reino: Fungi

– División: Ascomycota

– Clase: Ascomycetes

– Orden: Pleosporales

– Familia: Phaeosphaeriaceae

– Género: Ophiosphaerella

Ciclo de vida

El ciclo de vida de Ophiosphaerella comienza con la colonización de las superficies de las raíces, rizomas y estolones de las plantas de césped por parte de las especies de Ophiosphaerella. Estas especies producen ascos y ascosporas dentro de pseudotecios. Durante este período, las hifas crecen superficialmente en la superficie de la raíz y periódicamente infectan directamente el tejido cortical de la raíz. La infección puede ocurrir en raíces, estolones o rizomas, y en pocos días se puede observar necrosis localizada.

Imagen 1. Pseudotecios de color negro sobre raíz de bermuda. American Phytopathological Society

Las especies de Ophiosphaerella son hongos estériles de crecimiento lento en cultivo puro. A medida que la colonia madura, gradualmente se oscurece y se observan algunas diferencias entre las especies.

Imagen 2. Colonización ectotrófica de la superficie de la raíz. American Phytopathological Society

Las colonias maduras de O. herpotricha pueden ser de color marrón claro, grisáceo, naranja claro o marrón oscuro, mientras que las colonias de O. korrae producen micelio aéreo denso y típicamente varían de gris claro a gris oscuro, y O. narmari produce micelio aéreo disperso, con colonias de color blanco o beige. Las especies de Ophiosphaerella se consideran hongos ectotróficos que infectan las raíces, colonizando la superficie de los tejidos subterráneos antes de causar necrosis. Aunque se ha observado que O. herpotricha coloniza las raíces de bermuda, no se ha revelado la presencia del hongo dentro de los tejidos vasculares 14 días después de la infección.

Síntomas

Los síntomas de la enfermedad son más evidentes en primavera, de ahí el nombre “Spring Dead Spot”, pero también pueden observarse en otoño e invierno después de condiciones climáticas frías y/o húmedas.

Los síntomas de un césped afectado por la enfermedad conocida como “Spring Dead Spot” (SDS) incluyen la aparición de parches circulares de césped muerto, que a menudo se hacen evidentes en la primavera, cuando el resto del césped comienza a reverdecer. Estos parches pueden variar en tamaño desde unos pocos centímetros hasta 1 metro de diámetro y pueden expandirse año tras año. La hierba dentro de estos parches se torna de color amarillo pajizo a marrón y eventualmente muere, dejando áreas secas y decoloradas.

Imagen 3. Aparición de parches de SDS en un fairway. NC State University

Las raíces de las plantas afectadas se vuelven de color marrón oscuro a negro y están severamente podridas.

Imagen 4. Pudrición de raíz en bermuda. NC State University

La regeneración del césped en las áreas afectadas es lenta, y estas zonas pueden permanecer estériles o ser colonizadas por malezas. En algunos casos, después de 2 a 3 años, los centros de los parches activos pueden permanecer vivos, y el parche toma una apariencia en forma de anillo.

Imagen 5. Aparición del anillo. Lawn Doctor

Especies más vulnerables

Las especies de césped más vulnerables a la enfermedad conocida como “Spring Dead Spot” (SDS) son las variedades de Cynodon spp., que incluyen Cynodon dactylon (Bermuda común) y C. dactylon x C. transvaalensis (Bermudas hibridas, como la 419). Además, hay informes de que la SDS afecta a otras especies de césped C4 como Zoysia.

Otras especies de césped populares como Agrostis, Festucas, Stenotaphrum secundatum, Pennisetum clandestinum (kikuyu), Poa annua, Poa pratensis y Perennial Ryegrass (Lolium perenne) también pueden ser atacadas, sin embargo, las especies mencionadas al final son generalmente más tolerantes a la infección por SDS.

Condiciones que favorecen la enfermedad

  • Condiciones Favorecedoras:
    • Temperaturas Frescas: Entre 12°C y 14°C. Primavera y otoño.
    • Suelo Húmedo.
    • Raíces de Césped Creciendo Lentamente: Temperaturas de 15°C o menos.

  • Factores de Agravamiento:
    • Edad del Césped: Más de tres años.
    • Capa de Thatch: Más de 1.2 cm de espesor.
    • Mal Drenaje del Suelo.
    • Bajos Niveles de Potasio.
    • Aplicaciones excesivas de Nitrógeno en verano.

Control cultural

El control cultural es una parte esencial de la gestión de la enfermedad conocida como “Spring Dead Spot” (SDS) en céspedes de bermuda. Las prácticas culturales incluyen una variedad de técnicas que ayudan a mantener un césped saludable y resistente a la infección por SDS.

**Muestreo de Suelo**: Recolectar una muestra de suelo para determinar el pH y ajustarlo si es necesario. Mantener un pH ligeramente ácido puede mejorar la salud del césped.

**Fertilización Equilibrada**: Implementar programas de fertilización que incluyan niveles adecuados de nitrógeno y potasio. Evitar aplicaciones excesivas de nitrógeno, especialmente en la temporada tardía. Los bioestimulantes a base de algas son un refuerzo para la salud del césped.

**Control de mala hierba**: Mantener las malezas bajo control para mejorar la recuperación del césped y reducir la competencia por recursos.

**Gestión del thatch**: Evitar la acumulación excesiva de thatch, ya que puede crear condiciones favorables para la enfermedad. Realizar actividades como la aireación y la descompactación del suelo para mejorar la estructura del suelo y reducir la paja.

**Mejorar el Drenaje**: Asegurarse de que el césped tenga un buen drenaje para evitar la humedad excesiva del suelo, que puede favorecer el desarrollo de la enfermedad.

**Evitar la Sobreriego**: Regar el césped de manera adecuada, evitando el exceso de agua, especialmente al final del día para permitir que el césped se seque antes de la noche.

**Selección de Cultivares**: Elegir cultivares de bermudagrass con buena tolerancia al frío, ya que son menos afectados por la SDS.

Imagen 6. Labores de descompactación con cilindro hueco. Zulueta

Control químico

El control químico de la “Spring Dead Spot” (SDS) se logra mediante la aplicación preventiva de fungicidas en otoño, cuando las temperaturas del suelo están entorno a 20 °C. Es importante aplicar los fungicidas en un volumen alto de agua o regar inmediatamente después de la aplicación para mover el fungicida hacia la zona de las raíces.

Los fungicidas deben aplicarse antes de que el césped entre en dormancia. Es recomendable alternar fungicidas con diferentes ingredientes activos para evitar la resistencia.

Los productos registrados para uso incluyen ingredientes activos como fenarimol, myclobutanil, principalmente. Azoxystrobin, thiophanate-methyl, propiconazole, bitertanol, carbendazim, chlorothalonil, prochloraz, procymidone, propiconazole, thiram, thiram+quintozene, thiram+metiram, thiabendazole y triadimenol tambien son utilizados para este fin.

Imagen 7. Control afectado con SDS comparado con una muestra tratada previamente con fenarimol. American Phytopathological Society

La investigación ha demostrado que la eficacia de los fungicidas puede variar entre regiones y que la aplicación de fungicidas en otoño es más efectiva que en primavera. Además, una vez establecido el patógeno, la aplicación de fungicida reduce sensiblemente su eficacia.

Análisis y diagnóstico

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  • Butler, E. L. 2004. Development of novel strategies for control of spring dead spot in hybrid bermudagrass. M.S. thesis. North Carolina State Univ., Raleigh, N.C.
  • Dernoeden, P. H. 1993. Integrating strategies for the management of patch diseases caused by root invading ectotrophic fungi. Pages 123-161 in: Turfgrass Patch Diseases Caused by Ectotrophic Root-Infecting Fungi. B. B. Clarke and A. B. Gould, eds. American Phytopathological Society, St. Paul, MN.
  • Endo, R. M., Ohr, H. D., and Krausman, E. M. 1985. Leptosphaeria korrae, a cause of the spring dead spot disease of bermudagrass in California. Plant Dis. 69:235-237.
  • Iriarte, F. B., Todd, T. C., Tisserat, N. A., Fry, J. D., and Martin, D. L. 2005. Effect of cold acclimation and freezing on spring dead spot severity in bermudagrass. HortScience 40:421-423.
  • Jackson, N. 1993. Geographic distribution, host range, and symptomology of patch diseases caused by soilborne ectotrophic fungi. Pages 17-39 in: Turfgrass Patch Diseases Caused by Ectotrophic Root-Infecting Fungi. B. B. Clarke and A. B. Gould, eds. American Phytopathological Society, St. Paul, MN.
  • Landschoot, P., Gould, A. B., and Clarke, B. B. 1993. Ecology and epidemiology of ectotrophic root-infecting fungi associated with patch diseases of turfgrasses. Pages 73-105 in: Turfgrass Patch Diseases Caused by Ectotrophic Root-Infecting Fungi. B. B. Clarke and A. B. Gould, eds. American Phytopathological Society, St. Paul, MN.
  • Walker, J., and Smith, A. M. 1972. Leptosphaeria namari and L. korrae sp. nov., two long-spored pathogens of grasses in Australia. Trans. Brit. Mycol. Soc. 58:459-466.

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